Дослідження спектрального складу led-фітоламп для підвищення продуктивності овочевих культур у закритому ґрунті
DOI:
https://doi.org/10.25140/2411-5363-2025-3(41)-410-418Ключові слова:
фітолампа; спектральний склад; LED-освітлення; тепличне виробництво; фотосинтез; овочеві культуриАнотація
Розглянуто спектральні режими роботи LED-фітоламп як ефективного засобу стимулювання росту та підвищення продуктивності овочевих культур у закритому ґрунті. Проаналізовано результати експериментальних досліджень впливу червоного, синього, інфрачервоного та ультрафіолетового випромінювання на основні біометричні показники томатів і салату. Наведено порівняльні характеристики чотирьох варіантів спектрального освітлення, що дозволило встановити оптимальну комбінацію спектрів для підвищення врожайності та фотосинтетичної активності. Отримані результати можуть бути використані для проєктування енергоефективних систем освітлення в тепличному господарстві.
Посилання
Петров, О., & Іваненко, Л. (2023). Сучасні технології в тепличному господарстві: Автоматизація, енергоефективність та інновації. Технічні науки та агротехнології, 2(18), 45-52.
Ковальчук Р., & Савчук І. (2022). Вплив спектрального складу штучного освітлення на ріст і розвиток овочевих культур у захищеному ґрунті. Агротехнології та біоенергетика, 4(12), 33-40.
Ткаченко Л., & Бондар А. (2023). Ефективність застосування фітоламп із різним спектральним складом у тепличному рослинництві. Світ аграрної науки, 1(25), 58-64.
Мельник Д., & Гринюк О. (2024). Спектральна оптимізація LED-фітоламп для регуляції росту рослин у закритому ґрунті. Інженерія аграрних систем, 2(30), 41-48.
Сидоренко В., & Литвиненко Ю. Порівняльний аналіз спектральних характеристик фітоламп і традиційних джерел світла в аграрному виробництві. Світло в агросистемах, 3(11), 27-34.
Ehleringer J., & Björkman O. (1997). Quantum yields for CO₂ uptake in C₃ and C₄ plants: dependence on temperature, CO₂, and O₂ concentration. Plant Physiology, 1(59), 86-90.
Murchie E., & Lawson T. (2013). Chlorophyll fluorescence analysis: a guide to good practice and understanding some new applications. Journal of Experimental Botany, 13(64), 3983-3998.
Sager J., & McFarlane J. (1989). Radiation and photosynthesis. Plant Growth Chamber Handbook. 1-29.
Havaux, M. (1992). Stress tolerance of photosystem II in vivo: Antagonistic effects of photodamage and photoprotection due to carotenoids and epoxidation state of the xanthophyll cycle. Planta, 186(3), 450-460.
Дяченко І., & Романенко Л. (2023). Вплив спектрального складу світла на фотосинтетичну активність та пігментну систему рослин. Фізіологія рослин і клітинна біологія, 2(16), 21-28.
Maxwell K., & Johnson G. (2000). Chlorophyll fluorescence-a practical guide. Journal of Experimental Botany, 51(345), 659-668.
Tyystjärvi E., & Herranen M. (2018). Blue light reduces photosynthetic efficiency of cyanobacteria through an imbalance between photosystems I and II. Photosynthesis Research, 138, 103-116.
Zhang C., & Porcar-Castell A. (2019). Do all chlorophyll fluorescence emission wavelengths capture the spring recovery of photosynthesis in boreal evergreen foliage?. Plant, Cell & Environment, 42. 2455-2469.
Mickens M., & Torralba M. (2017). Modeling light distribution within plant canopies using ray tracing and computational geometry techniques. Frontiers in Plant Science, 8, 805-917.
##submission.downloads##
Опубліковано
Як цитувати
Номер
Розділ
Ліцензія
Ця робота ліцензується відповідно до Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License.
